Показателям системы детоксикации ксенобиотиков

Оценка безопасности наноматериалов по интегральным

БЕЗОПАСНОСТИ НАНОМАТЕРИАЛОВ МЕТОДОМ ЭКТАЦИТОМЕТРИИ

ПОРЯДОК РЕГИСТРАЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ ТЕСТИРОВАНИЯ

------------------------------T----------------------T---------------

-----

¦ ¦ tg альфа ¦

ID ¦

¦ ¦ ¦

max ¦

+-----------------------------+----------------------+---------------

-----+

¦ Фон ¦

¦ ¦

+-----------------------------+----------------------+---------------

-----+

¦ Нано (различные концентрации) ¦

¦ ¦

+-----------------------------+----------------------+---------------

-----+

¦ К (различные концентрации) ¦

¦ ¦

L-----------------------------+----------------------+---------------

------

Примечание. (tg альфа) - интенсивность деформации

эритроцитов в

сдвиговом потоке; (ID ) - максимальная растяжимость

эритроцитов в

max

сдвиговом потоке. Образцы крови: (Фон) - исходные; (Нано) - с

замещением

части плазмы на препарат наноматериала; (К) - с замещением части

плазмы на

раствор глицерина.

Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.

Статистический анализ данных проводят как указано в п.

6.4.1.5. IC

определяют предварительно согласно Руководству по

экспериментальному

(доклиническому) изучению новых фармакологических веществ/под

общей ред.

Хабриева Р.У. - 2 изд. - М.: ОАО "Издательство Медицина". - 2005. -

832 с.

Наноматериал признается безопасным по результатам

тестирования при

выполнении следующих критериев:

1) если интегральные параметры (индексы ID и tg альфа, а

также

max

эффективная вязкость крови k ) в опытных группах животных,

подвергшихся

воздействию наноматериала, не отличаются достоверно от контроля.

6.5.1. Метод гексеналовой пробы

6.5.1.1. Принцип метода

По продолжительности сна мышей и крыс после внутрибрюшинного введения гексеналового

наркоза можно оценить скорость метаболизма гексенала, осуществляемого цитохромом P-450-

зависимой монооксигеназной системой гепатоцитов, которая характеризует состояние

антитоксической функции печени.

6.5.1.2. Животные, оборудование и материалы

6.5.1.2.1. Животные

Мелкие лабораторные животные (крысы и мыши) линейные (крысы линий Wistar, Sprague-

Dawley и др.; мыши линий CBA, C57B1/6 и др.), так и нелинейные. В случае использования

линейных животных необходимо указать линию животных.

Количество животных в группе зависит от целей исследования, но не должно быть менее 10

особей в группе. Разброс по исходной массе тела животных в группе не должен превышать +/- 10%.

В течение всего эксперимента животные должны иметь свободный доступ к корму и питьевой воде

(за исключением времени измерения физиологических параметров). Для унификации исследований

животные на протяжении всего эксперимента получают полусинтетический рацион согласно МУ

1.2.2520-09 "Токсиколого-гигиеническая оценка безопасности наноматериалов".

6.5.1.2.2. Оборудование

Нагревательный столик ML-1.5-4 (ООО Мила-Форм, Россия, или аналогичный). Компьютер

IBM PC-совместимый по ГОСТ 27201-87 с установленным программным обеспечением SPSS 12

(SPSS Inc., США).

6.5.1.2.3. Материалы и реактивы

Одноразовые пластиковые шприцы по ГОСТ 24861-91.

Гексенал (кат. N W256102, Sigma-Aldrich).

6.5.1.3. Метод введения наноматериалов животным

Наноматериалы можно вводить: парентерально (внутривенно,

внутримышечно,

внутрибрюшинно), ингаляционно и перорально (в составе корма,

питьевой воды

или через зонд). Рекомендуется проводить подострое (ежедневное

введение в

течение 3 месяцев) и хроническое введение (ежедневное введение в

течение 6

месяцев и более) наноматериала. Введение наноматериала проводят за 1

час до

проведения наркоза. При подостром и хроническом введении

наноматериала

гексеналовую пробу осуществляют на 10, 30, 60 и 90 сут. и на 30 и

180 сут.

и более, соответственно. Дозы введения наноматериала при

подостром

воздействии - от минимальной токсической дозы до 1/5 LD , при

хроническом

воздействии - от 1/3 до 1/10 части минимальной токсической дозы.

6.5.1.4. Проведение измерений

Осуществляют наркотизирование лабораторных животных с помощью гексеналового наркоза.

Гексенал вводят мышам - в дозе 80 мг/кг, крысам - в дозе 60 мг/кг внутрибрюшинно.

Животных помещают на столик, нагретый до 37 °C и измеряют продолжительность состояния

наркоза.

6.5.1.5. Анализ и интерпретация полученных данных

Статистический анализ данных проводят, как указано в п. 6.2.1.5.

Расчет

LD , минимальной токсической дозы производят при предварительной

оценке

острой токсичности наноматериала согласно МУ

1.2.2520-09

"Токсиколого-гигиеническая оценка безопасности наноматериалов".

Наноматериал признается безопасным по результатам тестирования, если продолжительность

наркоза в опытных группах животных, подвергшихся воздействию наноматериала, не отличается

достоверно от контроля.

6.5.2. Метод пробы с бромсульфалеином

6.5.2.1. Принцип метода

Бромсульфалеиновая проба относится к числу наиболее информативных и чувствительных

методов исследования поглотительно-выделительной функции печени. Скорость элиминации

бромсульфалеина (БСФ) (в виде конъюгатов с цистеином и глутатионом) является показателем

состояния экскреторной и антитоксической функции печени. БСФ-проба становится положительной

при любых поражениях паренхимы органа (острые и хронические гепатиты, жировой гепатоз, цирроз

печени, доброкачественная гипербилирубинемия и др.), даже на самых ранних стадиях развития

заболевания и хорошо коррелирует с тяжестью патологического процесса.

6.5.2.2. Животные, оборудование и материалы

6.5.2.2.1. Животные

Мелкие лабораторные животные (крысы и мыши) линейные (крысы линий Wistar, Sprague-

Dawley и др.; мыши линий CBA, C57B1/6 и др.), так и нелинейные. В случае использования

линейных животных необходимо указать линию животных.

Количество животных в группе зависит от целей исследования, но не должно быть менее 10

особей в группе. Разброс по исходной массе тела животных в группе не должен превышать +/- 10%.

В течение всего эксперимента животные должны иметь свободный доступ к корму и питьевой воде

(за исключением времени измерения физиологических параметров). Для унификации исследований

животные на протяжении всего эксперимента получают полусинтетический рацион согласно МУ

1.2.2520-09 "Токсиколого-гигиеническая оценка безопасности наноматериалов".

6.5.2.2.2. Оборудование

Нагревательный столик ML-1.5-4 (ООО Мила-Форм, Россия, или аналогичный). Лабораторная

центрифуга с охлаждением, рассчитанная на ускорение до 10000 g. CM 6.03 ELMI (Латвия) или

аналогичная; Клетки для содержания животных "плексигласовый домик" (ООО "СПИ", Россия, или

аналогичный). Палочка (лопаточка) глазная (Апекслаб, Россия, или аналогичная).

Компьютер IBM PC-совместимый по ГОСТ 27201-87 с установленным программным

обеспечением SPSS 12 (SPSS Inc., США) или с аналогичными параметрами.

6.5.1.2.3. Материалы и реактивы

Одноразовые пластиковые пробирки по ТУ 64-2-30-80. Дозаторы пипеточные по ТУ 64-16-55-

90 с диапазоном объема доз 20 - 200 куб. мм и 200 - 1000 куб. мм и дискретностью установки доз 1 и

5 куб. мм, соответственно, с наконечниками. Одноразовые пластиковые шприцы по ГОСТ 24861-91.

Бромсульфалеин фирмы "Sigma", США, или аналогичный.

6.5.1.3. Метод введения наноматериалов животным

Наноматериалы можно вводить: парентерально (внутривенно, внутримышечно,

внутрибрюшинно), ингаляционно и перорально (в составе корма, питьевой воды или через зонд).

Рекомендуется проводить подострое (ежедневное введение в течение 3 месяцев) и хроническое

введение (ежедневное введение в течение 6 месяцев) наноматериала.

Введение наноматериала проводят за 1 час до проведения

анализа. При

подостром и хроническом введении наноматериала анализ проводят на

10, 30,

60 и 90 сут. и на 30 и 180 сут., соответственно. Дозы

введения

наноматериала при подостром воздействии - от минимальной

токсической дозы

до 1/5 LD , при хроническом воздействии - от 1/3 до 1/10 части

минимальной

токсической дозы.

6.5.1.4. Проведение измерений

БСФ вводят в хвостовую вену животного в дозе 1 - 5 мг/кг. Через 1, 5, 15 и 45 минут после

введения красителя спектрофотометрическим методом определяют содержание БСФ в крови

животного. Вычисляют коэффициент ретенции БСФ, элиминируемого в виде конъюгатов с

цистеином и глутатионом.

Кровь у мелких лабораторных животных (мыши, крысы) можно отбирать из хвоста или из

сердца (в случае вскрытия животных). Оптимальный объем сыворотки крови - не менее 30 куб. мм.

Забор крови производят в одноразовые пластиковые пробирки.

После забора крови пластиковые пробирки закрывают крышками и центрифугируют от 10 сек.

до 1 мин. при скорости до 2000 g, чтобы сбросить капельки крови, осевшие на стенки пробирок, не

дав им высохнуть. Для получения плазмы кровь отбирают в пробирки, куда предварительно внесен

раствор гепарина (10 ед./куб. см). Пробирки центрифугируют в течение 10 мин. на скорости 2000 g.

Отбирают плазму, не задевая клеток, в отдельную пробирку, которую маркируют (например, П -

плазма).

6.5.1.5. Анализ и интерпретация полученных данных

Статистический анализ данных проводят, как указано в п. 6.2.1.5.

Расчет

LD , минимальной токсической дозы производят при предварительной

оценке

острой токсичности наноматериала согласно МУ

1.2.2520-09

"Токсиколого-гигиеническая оценка безопасности наноматериалов".

Наноматериал признается безопасным по результатам тестирования, если через 45 мин.

содержание БСФ не превышает 5% от первоначального уровня в крови, взятой через 3 минуты после

введения красителя.

5rik.ru

Материалы для учебы и работы

Показателям системы детоксикации ксенобиотиков